PRÁCTICA Nº 3
Omnipresencia de hongos
en ambientes naturales.
Dalila Montañez
Alcibiades Garibaldo
Objetivos generales:
Ø Demostrar la presencia de los
microorganismos en todos los ambientes que nos rodean.
Ø Destacar la importancia de la
omnipresencia de los microorganismos en muestras de suelo, agua, aire y cuerpo
humano.
Introducción
Los microorganismos se encuentran
distribuidos sobre todos los ambientes que encontramos en nuestro planeta, de
allí podemos atribuir el término de omnipresencia.
El agua en condiciones naturales
contiene un gran número de microorganismos entre los cueles podemos señalar
a los hongos. De todos los ambientes,
el suelo es el que contiene la mayor diversidad de microorganismos,
estos contaminan la superficie e interior de las plantas que crecen sobre el
mismo. Las corrientes de aire y el polvo constituyen una fuente importante de
contaminación del medio ambiente, los principales microorganismos que podemos
encontrar presentes lo constituyen microorganismos patógenos, especialmente
causantes de infecciones respiratorias.
Uno de los métodos más simples para
detectar microorganismos presentes en el aire es exponer un plato petri abierto
el cual contiene un medio de cultivo apropiado para el crecimiento de
microorganismos como bacterias y hongos, el mismo se deja abierto por varios
minutos o inclusive se puede dejar hasta por 2 horas, este procedimiento se
conoce como método de placa fija.
Como la cantidad de microorganismos
que encontramos presentes en algunos tipos de muestras ciertas veces es tan
elevada, debemos de recurrir a las
diluciones de las muestras con la finalidad de determinar el UFC de la muestra.
Materiales
13 platos petri con agar papa
dextrosa
1 botella de vidrio con 90 ml de agua peptonada estéril
Muestra de suelo
10 tubos con rosca con 9 ml de agua
peptonada estéril
11 pipetas estériles de 1 ml
Espátula
Levadura en bolita
Un tubo de ensayo con agua azucarada
Porta objetos
Cubre objetos
Safranina
Muestra de agua estancada
Procedimiento
A.
Muestra
ambiental- Aire
1.
Tome
4 platos petri con agar papa dextrosa
2.
Coloque
uno de los platos sin tapa sobre la mesa de trabajo por 15 minutos, otro plato
coloque lo abierto sobre el piso por 30
minutos, el siguiente plato colóquelo abierto por 15 minutos a la entrada del
edificio y el último plato colóquelo sin tapa en el piso a la entrada del
edificio por 30 minutos.
3.
Transcurrido
el tiempo de muestreo cierre los platos e incúbelos de 3 a 5 días a temperatura
ambiente.
4.
Haga
las observaciones macroscópicas y microscópicas de las colonias que se
desarrollan en los platos.
5.
En
el caso del crecimiento de hongos unicelulares realice la tinción de Gram, y en
el caso de crecimiento de hongos filamentosos realice un frotis con azul de
lactoglicerol.
B.
Dilución de suelo
1.
Pese
10 g de suelo seco y añádalo a una botella que contenga 90 ml de agua peptonada
estéril. Esta será la primera dilución es decir 10-1 o 1:10
2.
Agite
la botella de 3 a 5 minutos
3.
Utilizando
una pipeta estéril transfiera 1 ml de la primera dilución (10-1) a
un tubo de ensayo que contiene 9 ml de agua peptonada estéril. Rotule
inmediatamente después, esta será la dilución 10-2 o 1:100.
4.
Las
siguientes diluciones serán preparadas de la misma forma como lo hizo en el
paso anterior.
5.
Las
diluciones deben ser preparadas hasta 10-6.
6.
Con
la pipeta que utilizó para preparar la dilución 10-2 transfiera 0.1
ml de la dilución 10-1 a un plato petri con agar papa dextrosa el
cuál identificará como 10-1.
7.
Con
un esparcidor de metal o de vidrio estéril proceda a distribuir la muestra
sobre la superficie del medio de cultivo.
8.
Con
la pipeta que preparó la dilución 10-3 transfiera 0.1 ml de la
dilución
10-2 a un plato petri rotulado como 10-2.
Así sucesivamente prepare los platos hasta llegar a la dilución de 10-6.
9.
Incube
los platos en posición invertida a una temperatura que oscila entre 26 y 28ºC.
Realice una revisión de los platos 3 días después de iniciado el ensayo y anote
sus resultados. Recuerde que los hongos filamentosos requieren de 3 a 5 días
para su incubación.
C.
Hongos
unicelulares- Levaduras
1.
Con
una espátula limpia tome una porción de levadura seca activa y deposítela en un
tubo con agua azucarada estéril.
2.
Déjelo
reposar por algunos minutos y observe algún cambio aparente
3.
Con
un asa bacteriológica proceda a tomar una muestra y deposítela sobre un porta
objeto limpio donde previamente ha colocado una gota de colorante safranina.
4.
Inmediatamente
coloque un cubre objeto sobre la preparación
5.
Observe
al microscopio con el objetivo de alto poder, describa lo observado.
6.
Trate
de buscar células en fase reproductiva (gemación)
D.
Hongos
dermatofitos
1.
En
3 platos petri conteniendo agar papa dextrosa inocule en cada uno muestras de
cabellos, uñas y piel.
2.
Incubar
los platos rotulados, a temperatura ambiente de 3 a 5 días.
3.
Haga
sus observaciones sólo macroscópicamente.
E.
Recuento
de hongos filamentosos y levaduras- Técnica de Petrifilm
1.
Adicione
1 ml de la muestra de agua estancada en 9 ml de agua peptonada estéril,
homogenizar la muestra por 2 minutos. Rotule como dilución 1:10 o 10-1.
2.
Del tubo 10-1 con una pipeta estéril
transfiera 1 ml de la muestra y deposítelo en un tubo que contiene 9 ml de agua
peptonada estéril, marcar el tubo como 1:100 o 10-2.
3.
Continúe
diluyendo hasta 10-5.
4.
Vierta
1 ml de cada dilución en el centro de placas petrifilm para levaduras y hongos
filamentosos. Déjela solidificar e incúbelas a temperatura ambiente por 3 a 5
días.
5.
Luego
proceda a observar y contar el número de colonias crecidas y seleccione el
plato que contiene entre 15 y 150 colonias para determinar el número de
microorganismos por gramo de la muestra.
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